Влияние концентрации спермы в нативных эякулятах петухов на кинетические показатели размороженных гамет

Одним из способов повышения эффективности искусственного осеменения у птиц является ранний отбор самцов, продуцирующих сперму с высокими показателями криорезистентности. Первичная оценка эякулятов играет важную роль в прогнозировании жизнеспособности и может стать основой для разработки критериев качества декриоконсервированного семени. В проведенном нами исследовании на выборке петухов (n=139) от 20 пород и популяций были выявлены прогностические признаки, позволяющие на основе оценки показателей нативных эякулятов, сделать выводы о функциональной активности декриоконсервированных сперматозоидов. При концентрации сперматозоидов в нативном эякуляте 3,500 млрд/мл после криоконсервации отмечен максимальный процент гамет с высокими кинетическими показателями (38,12±1,68%). А максимальный процент декриоконсервированных сперматозоидов с высокими показателями общей подвижности (37,05±1,03%) был получен в случае замораживания образцов нативной спермы с общей подвижностью выше 85%.

1. Arif A., Zahoor N, Tang J., Tang M., Dong L., Khan S.Z., Dai G. Cryopreservation strategies for poultry semen: a comprehensive review of techniques and applications. Veterinary sciences. 2025;12:145. doi:10.3390/vetsci12020145

2. Benesova B., Trefil P. Possibilities for preserving genetic resources in birds. World’s poultry science journal. 2016; 72(3): 629-642. doi.org/10.1017/S0043933916000489

3. Wolkers W. F., Woelders H. O. Cryopreservation and Freeze-Drying Protocols. Methods in molecular biology. 2015. doi:10.1007/978-1-0716-0783-1_16

4. Çiftci H.B., Aygün A. Poultry semen cryopreservation technologies. World’s poultry science Journal. 2018;74(4):699-710. doi:10.1017/S0043933918000673

5. Tselutin K., Seigneurin F., Blesbois E. Comparison of cryoprotectants and methods of cryopreservation of fowl spermatozoa Poultry science. 1999; 78: 586-590. doi:10.1093/ps/78.4.586

6. Sun Y., Li Y., Zong Y., Mehaisen G. M. K., Chen J. Poultry genetic heritage cryopreservation and reconstruction: advancement and future challenges. Journal of animal science and biotechnology.2022; 13(115). doi:10.1186/s40104-022-00768-2

7. Janosikova M., Petricakova M., Ptacek M., Savvulidi F. G., Rychtarova J., Fulka J., New approaches for long-term conservation of rooster spermatozoa. Poultry science. 2023; 102(2). doi: 10.1016/j.psj.2022.102386

8. Zhang L., Sun Y., Jiang C., Sohail T., Sun X., Wang J., Li Y. Damage to mitochondria during the cryopreservation, causing ROS leakage, leading to oxidative stress and decreased quality of Ram sperm. Reproduction in domestic animals. 2024; 59(10). doi: 10.1111/rda.14737

9. Zong Y., Li Y., Sun Y., Han X., Yuan J., Ma L., Ma H., Chen J. Mitochondrial aspartate aminotransferase (GOT2) protein as a potential cryodamage biomarker in rooster spermatozoa cryopreservation. Poultry science. 2025; 104(2). doi:10.1016/j.psj.2024.104690.

10. Xue F., Liu Y., Lv Z., Zhang J., Xiong S., Zha L., Liu Z., Shu J. Regulatory effects of differential dietary energy levels on spermatogenesis and sperm motility of yellowfeathered breeder cocks. Frontiers in veterinary science. 2022; 29(9). doi: 10.3389/fvets.2022.964620

11. Ayeneshet B., Taye M., Esatu W., Tsefa A. Comparative analysis of semen quality and fertility in diverse rooster breeds: a systematic review. World’s Poultry Science Journal. 2024;80(3):947–975. doi:10.1080/00439339.2024.2338347

12. Madeddu M., Zaniboni L., Marelli S.P., Tognoli C., Belcredito S., Iaffaldano N., Di Iorio M., Cerolini S. Selection of male donors in local chicken breeds to implement the Italian semen cryobank: variability in semen quality, freezability and fertility. Veterinary science. 2024; 11(4):148. doi:10.3390/ vetsci11040148

13. Mohan J., Sharma S. K., Kolluri G. Dhama K. History of artificial insemination in poultry, its components and significance. World’s poultry science journal. 2018; 74(3): 475-488. doi:10.1017/S0043933918000430

14. Duračka M., Benko F., Tvrdá E. Molecular markers: a new paradigm in the prediction of sperm freezability. International journal of molecular sciences. 2023; 24(4): 3379. doi:10.3390/ijms24043379

15. Ezzati M., Shanehbandi D., Hamdi K., Rahbar S., Pashaiasl M. Influence of cryopreservation on structure and function of mammalian spermatozoa: an overview. Cell Tissue Banking. 2020;21(1):1–15. doi:10.1007/s10561-019-09797-0

16. Li Y, Sun Y, Ni A, Tesfay HH, Isa AM, Zong Y, Ma H, Yuan J, Chen J. Factor analysis of semen quality in chicken and its impact on fertility. Animals. 2025;15(13):1906. doi: 10.3390/ani15131906.

17. Shawky M, Fawy A.F., Elomda A.M., Elmenawey M.A., Atta A.M., Abbas A.O., Mehaisen G.M.K. Effect of semen dilution rate and dimethyl acetamide levels on post-thaw motility and fertility parameters of rooster sperm. PLoS One. 2025; 20(10). doi:10.1371/journal.pone.0335748

18. Alvarez M., Tamayo-Canul J., Anel E., Boixo J. C., Mata-Campuzano M., Martinez-Pastor F., Anel L., Paz P. Sperm concentration at freezing affects post-thaw quality and fertility of ram semen. Theriogenology. 2012; 77(6):1111-1118. doi: 10.1016/j.theriogenology.2011.10.013

19. Nascimento J., Raphael C. F., Andrade A. F.C., Alonso M. A., Celeghini E. C.C., Arruda R. P. Effects of Sperm Concentration and Straw Volume on Motion Characteristics and Plasma, Acrosomal, and Mitochondrial Membranes of Equine Cryopreserved Spermatozoa. Journal of equine veterinary science. 2008;28(6):351-358. doi:10.1016/j.jevs.2008.04.010

20. Díaz Ruiz E., Delgado Bermejo J. V., Navas González F. J., León Jurado J. M., González Ariza A. Packaging with lower sperm concentrations improves post-thawing quality parameters of rooster semen. Italian journal of animal science. 2025; 24(1):89–100. doi:10.1080/1828051X.2024.2442042

21. Chaithongsri M., Pachamon K., Koedkanmark T., Boonkum W., Duangjinda M., Chankitisakul V. Research note: Effect of sample type, sperm concentration, and storage conditions on malondialdehyde levels in rooster semen. Poultry science. 2026;105(5). doi:10.1016/j.psj.2025.106054.

22. Patricio A., Cruz D.F., Silva J.V., Padrão A., Correia B. R., Korrodi-Gregório L., Ferreira R., Maia N., Almeida S., Lourenc¸ J., Silva V., Fardilha M. Relation between seminal quality and oxidative balance in sperm cell. Acta Urológica Portuguesa. 2016; 33(1):6-15. doi:10.1016/j.acup.2015.10.001