Изменение белкового спектра сыворотки крови больных микоплазмозом коров при использовании для лечения тулатромицина и тималина

Интенсивные технологии ведения животноводства подразумевают максимальное использование продуктивных качеств животных, реализацию которых сдерживают заболевания различного генеза, особенно те, которые сопровождаются длительным хроническим течением. Среди них особое место занимает генитальный микоплазмоз крупного рогатого скота. Целью наших исследований являлось изучение белкового спектра сыворотки крови у больных генитальным микоплазмозом кров при использовании для лечения тулатромицина и тулатромицина в сочетании с тималином. Для проведения эксперимента было сформировано три группы стельных коров, по 8 голов в каждой. Первая группа – стельные коровы с генитальным микоплазмозом для лечения которых использовали антибиотик траксовет 100 (тулатромицин). Вторая группа - стельные коровы с генитальным микоплазмозом для лечения которых использовали антибиотик траксовет 100 и иммуномодулятор тималин. Третья группа (контроль) – клинически здоровые стельные коровы. У всех групп животных в сыворотке крови определяли: содержание общего белка, альбуминов, глобулинов и иммуноглобулинов классов G, M, A. Антибиотикотерапия больных генитальным микоплазмозом коров приводит к элиминации возбудителя из генитального тракта у 75% животных, тогда как при сочетании антибиотика и иммуномодулятора ни у одного животного из группы микоплазмы не были обнаружены. Применение для лечения коров с генитальным микоплазмозом тулатромицина приводит лишь к частичной нормализации белкового спектра сыворотки крови, тогда как использование для лечения комбинации тулатромицина и тималина обеспечивает полное восстановление изучаемых показателей до уровня клинически здоровых животных.

1. Васильев, Р.М. Роль хламидийной и микоплазменной инфекции в этиологии бесплодия у крупного рогатого скота /Р.М. Васильев// Международный вестник ветеринарии. - 2008.- №3.- С. 15-16.

2. Васильев, Р.М. Динамика показателей неспецифической резистентности коров больных генитальным микоплазмозом на фоне терапии тулатромицином. /Р.М. Васильев// Нормативно-правовое регулирование в ветеринарии. - 2022. - №2. - С. 42-44.

3. Васильев, Р. М. Влияние терапии тулатромицином на иммунный статус больных микоплазмозом коров и рожденных ими телят / Р. М. Васильев // Международный вестник ветеринарии. – 2023. – № 1. – С. 71-78.

4. Изменения в динамике гормонов в течение полового цикла у мясного скота калмыцкой породы / Э. А. Альмтаев, Г. С. Никитин, С. П. Перерядкина [и др.] // Современные научные тенденции в ветеринарии: Сборник статей Международной научно-практической конференции, Пенза, 01–02 декабря 2022 года. – Пенза: Пензенский государственный аграрный университет, 2023. – С. 6-9.

5. Красиков, А.П. Микоплазмозы человека и животных их эпидемиологическое и эпизоотологическое значение / А.П. Красиков, Н.В. Рудаков. – Омск: ООО ИЦ «Омский научный вестник», 2015. – 717 с.

6. Лещинский, И.И. Макролиды - препараты выбора для борьбы с микоплазмозами животных / И.И. Лещинский // РВЖ СХЖ, 2009. - №1. - С. 44-45.

7. Распространение микоплазмозов крупного рогатого скота на животноводческих фермах в Российской Федерации в период с 2015 по 2018 год. / М. А. Алхуссен, А. А. Нестеров, В. В. Кирпиченко [и др.] // Ветеринария сегодня. – 2020. №2 (33). С. 102-108.

8. Хавинсон, В.Х. Мета-анализ иммуномодулирующей активности лекарственного пептидного препарата тималина /В.Х. Хавинсон, А.А. Корнеенков, И.Г. Попович // Современные проблемы здравоохранения и медицинской статистики. – 2020. - №4. – С. 108-124.

9. Busharova, Ju. V. Humoral factors of protection of the vaginal mucosa in healthy cows and with mycoplasmosis / Ju.V. Busharova, R.M. Vasiliev, S.V. Vasilieva, V.A. Trushkin, A.A. Nikitina, [et al.] // Journal of Animal Science. 2021. T. 99. № S3. C. 273.

10. Cooper, A.C. In vitro activity of danofloxacin, tylosin and oxytetracycline against mycoplasmas of veterinary importance / A.C. Cooper, J.R. Fuller, M.K. Fuller, P. Whittlestone, D.R. Wise // Research in Veterinary Science. – 1993. – Vol. 54, Issue 3. – Р. 329-334.

11. Marouf, S. A. Detection of Mycoplasma bovis and Mycoplasma bovigenitalium in cattle and buffalo in Egypt using dot ELISA and PCR with anti-microbial trials. / S. A. Marouf, Kh. F. Mohamed, J. El-Jakee// European J. Biol. Sci. – 2011. Vol. 3, №1. - P. 1–8.

12. Nikitina, A. Comparative assessment of the content of immunoglobulins in the blood serum of calves obtained from healthy cows and cows with genital mycoplasmosis / A. Nikitina, R. Vasiliev, S. Kovalev, V. Trushkin // FASEB Journal. 2022. - Т. 36. № S1. - С. R3467.

13. Pilo, P. A metabolic enzyme as a primary virulence factor of Mycoplasma mycoides subsp. mycoides small colony/ P. Pilo, E.M. Vilei, E. Peterhans [et. al.] // J. Bacteriol. – 2005. - Vol. 187. – P. 6824 – 6831.

14. Trichard, C.J. Mycoplasmas recovered from bovine genitalia, aborted foetuses and placentas in the Republic of South Africa. Onderstepoort. /C.J. Trichard, E.P. Jacobsz// J Vet Res. – 1985. Vol. 52, №2. P. 105-110.