Сравнительная оценка методов диагностики генитального микоплазмоза крупного рогатого скота
https://doi.org/10.52419/issn2782-6252.2025.2.45
Аннотация
Вопросы точной и своевременной диагностики заболеваний животных, а также совершенствования их методов всегда были и остаются актуальными. Особую важность они приобретают, когда заболевание характеризуется неспецифической клинической картиной и наличием длительного латентного периода, что и наблюдается при генитальном микоплазмозе крупного рогатого скота. В литературном обзоре рассмотрены наиболее распространенные методы лабораторной диагностики данного заболевания, отмечены их достоинства и недостатки, относительно применения в промышленном животноводстве. На основании проведенного сравнительного анализа обосновано применение того или иного метода диагностики, исходя из целей и задач исследования.
Об авторе
Р. М. Васильев
Санкт-Петербургский государственный университет ветеринарной медицины
Россия
Россия
Роман Михайлович Васильев - канд. ветеринар. наук, доц.,
Список литературы
1. Борхсениус С.Н. Микоплазмы в биологии и медицине начала XXI века / С.Н. Борхсениус, О.А. Чернова, В.М. Чернов, И.Е. Вишняков. // СПб.: Наука. 2016. 333 с.
2. Hazelton M.S., Morton J.M., Bosward K.L., et al. Mycoplasma species in vaginas of dairy cows before and after exposure to bulls and their association with conception /M.S. Hazelton, J.M. Morton, K.L. Bosward, [et al.]//Journal of Dairy Science. 2020; 103(12): 11795-11805. doi.org/10.3168/jds.2020-18758
3. Алхуссен М.А., Кирпиченко В.В., Яцентюк С.П. и др. Патогенные микоплазмы крупного рогатого скота Mycoplasma bovis, M. bovigenitalium и M. dispar: краткая характеристика возбудителей (обзор) / М. А. Алхуссен, В.В. Кирпиченко, С.П. Яцентюк [и др.] // Сельскохозяйственная биология. 2021; 56 (2): 245-260.
4. Langford E.V. Mycoplasma species recovered from the reproductive tracts of western Canadian cows. Can J Comp Med. 1975;39(2): 133-138.
5. Vasiliev R.M., Vasilieva S.V. Immuno-biological properties of vaginal discharge in healthy and mycoplasmosis-infected cows. Medical Immunology (Russia). 2021;23(4): 987-990. DOI 10.15789/1563-0625-IBP-2278
6. Алхуссен М.А., Нестеров А.А., Кирпиченко В.В. и др. Распространение микоплазмозов крупного рогатого скота на животноводческих фермах в Российской Федерации в период с 2015 по 2018 год. / М. А. Алхуссен А. А. Нестеров В. В. Кирпиченко [и др.] // Ветеринария сегодня. июнь №2 (33) 2020. С. 102-108.
7. Васильев Р.М. Роль хламидийной и микоплазменной инфекции в этиологии бесплодия у крупного рогатого скота / Р. М. Васильев // Международный вестник ветеринарии. 2008. № 3. С. 15-16.
8. Ghanem M.E. Mycoplasma infection in the uterus of early postpartum dairy cows and its relation to dystocia and endometritis. /M. E. Ghanem, H. Higuchi, E. Tezuka [et al.]// Theriogenology. 2013. Vol.79. №1. P. 180 - 185.
9. Pohjanvirta T., Vähänikkilä N., Mutikainen M. et al. Transmission of Mycoplasma bovis infection in bovine in vitro embryo production /T. Pohjanvirta, N. Vähänikkilä, M. Mutikainen [et al.]// Theriogenology. 2023 Vol. 199. P. 43-49, doi.org/10.1016/j.theriogenology.2023.01.011
10. Красиков А.П. Микоплазмозы человека и животных их эпидемиологическое и эпизоотологическое значение / А.П. Красиков, Н.В. Рудаков.// Омск: ООО ИЦ «Омский научный вестник». 2015. 717 с.
11. Parker A.M., Sheehy P.A., Hazelton M.S. et al. A review of mycoplasma diagnostics in cattle / A.M. Parker, P.A. Sheehy, M.S. Hazelton [et al.] // J. Veterinary Internal Medicine. 2018. № 3(32). P. 1241-1252.
12. McVey D.S. et al. Veterinary Microbiology. - 3rd ed. / D.S. McVey, M.A. Kennedy, M.M. Chengappa. Wiley-Blackwell. 2013. 629 p.
13. Dudek K., Nicholas R.A.J., Szacawa E., Bednarek D. Mycoplasma bovis Infections—Occurrence, Diagnosis and Control / K. Dudek R.A.J. Nicholas, E. Szacawa, D. Bednarek // Pathogens. 2020;8(9): 1-21.
14. Babacan O., Acan M., Öncel T. et al. Diagnosis of Mycoplasma bovis infection in cattle by ELISA and PCR / O. Babacan, M. Acan, T. Öncel [et al.] // Kafkas Universitesi Veteriner Fakultesi Dergisi. 2014;2(20): 249-252.
15. Hazelton M.S., Morton J.M., Bosward K.L. et al. Isolation of Mycoplasma spp. and serological responses in bulls prior to and following their introduction into Mycoplasma bovis-infected dairy herds /M.S. Hazelton, J.M. Morton, K.L. Bosward [et al.] // Journal of Dairy Science. 2018. Vol. 101, Issue 8. P. 7412-7424. doi.org/10.3168/jds.2018-14457
16. Wawegama N.K., Browning G.F., Kanci A. et al. Development of a recombinant protein-based enzymelinked immunosorbent assay for diagnosis of Mycoplasma bovis infection in cattle / N.K. Wawegama, G.F. Browning, A. Kanci [et al.] // Clinical and Vaccine Immunology: CVI. 2014. № 2 (21). P. 196-202.
17. Sun Z., Fu P., Wei K. et al. Identification of novel immunogenic proteins from Mycoplasma bovis and establishment of an indirect ELISA based on recombinant E1 beta subunit of the pyruvate dehydrogenase complex / Z. Sun, P. Fu, K. Wei [et al.] // PLoS ONE. 2014. № 2(9). 8 p.
18. Appelt S., Aly S.S., Tonooka K. et al. Development and comparison of loop-mediated isothermal amplification and quantitative polymerase chain reaction assays for the detection of Mycoplasma bovis in milk /S. Appelt, S.S. Aly, K. Tonooka [et al.] // Journal of Dairy Science. 2019. Vol. 102, Issue 3. P. 1985-1996. doi.org/10.3168/jds.2018-15306
19. Wisselink H.J., Smid B., Plater J. et al. A European interlaboratory trial to evaluate the performance of different PCR methods for Mycoplasma bovis diagnosis / H.J. Wisselink, B. Smid, J. Plater [et al.] //BMC Veterinary Research. 2019. № 1(15). P. 86.
20. Neder V.E. Detection by multiplex PCR of Mycoplasma species associated with dairy cattle in Argentina, / V.E. Neder, A.F. Amadio, L.F. Calvinho//Revista Argentina de Microbiología. 2022. Vol. 54. Issue 2. P. 158-161. doi.org/10.1016/j.ram.2021.07.001
21. O’Neill R., Mooney J., Connaghan E. et al. Patterns of detection of respiratory viruses in nasal swabs from calves in Ireland: A retrospective study / R. O’Neill, J. Mooney, E. Connaghan [et al.] // Veterinary Record. 2014. №14(175). P. 351-351.
22. Edwards D.J. Beginner’s guide to comparative bacterial genome analysis using next-generation sequence data / D.J. Edwards, K.E. Holt // Microbial Informatics and Experimentation. 2013. № 1(3). P. 1-9.
23. Hata E. Complete genome sequence of Mycoplasma bovigenitalium Strain HAZ 596 from a bovine vagina in Japan / E. Hata, K. Nagai, K. Murakami // Genome Announcements. 2017. № 6(5). 8 p.
Рецензия
Для цитирования:
Васильев Р.М. Сравнительная оценка методов диагностики генитального микоплазмоза крупного рогатого скота. Нормативно-правовое регулирование в ветеринарии. 2025;(2):45-49. https://doi.org/10.52419/issn2782-6252.2025.2.45
For citation:
Vasiliev R.M. Comparative assessment of diagnostic methods for genital mycoplasmosis in cattle. Legal regulation in veterinary medicine. 2025;(2):45-49. (In Russ.) https://doi.org/10.52419/issn2782-6252.2025.2.45
Просмотров:
0
Послать статью по эл. почте 