Криоконсервация спермы жеребцов в разны х разбавителях

Криоконсервация наносит вред выживаемости и фертильности сперматозоидов из-за физического и химического стресса, оказываемого на клетки во время замораживания. Сперма жеребцов обладает низкой криоустойчивостью. Совершенствование протокола криоконсервации, включая состав разбавителя является актуальным. В данном исследовании проведен анализ использования двух разбавителей для центрифугирования и криоконсервации спермы жеребцов. Было проанализировано 27 эякулятов от 9 жеребцов. Анализ показал достоверное различия (Р˂0,05) по оценке подвижности и числу клеток без повреждений после центрифугирования в разных разбавителях. Лучше оказался опытный разбавитель. Достоверных различий по количеству сперматозоидов с повреждениями хвоста, акросомы, ДНК и по уровню стимуляции дыхания 2,4 ДНФ не наблюдалось. Использование опытного разбавителя лучше сохраняло подвижность (Р˂0,05), морфологию сперматозоидов (Р˂0,01), акросомы (Р˂0,05) и сопряженность дыхания и фосфорилирования (2,4 ДНФ тест) (Р˂0,01) при выбранном протоколе криоконсервации спермы по сравнению с разбавителем ЛЦХЖ.

1. Атрощенко М.М., Калашников В.В., Брагина Е.Е., Зайцев А.М. Сравнительное изучение ультраструктуры сперматозоидов в эпидидимальной, эякулированной и криоконсервированной сперме жеребцов. Сельскохозяйственная биология. 2017;52(2): 274-281. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2017.2.274rus

2. Boni R., Ruggiero R., Di PalmaT., Ferrara M.A., Preziosi G., Cecchini Gualandi S. Stallion Sperm Freezing with Different Extenders: Role of Antioxidant Activity and Nitric Oxide Production. Animals. 2024;14:2465. https://doi.org/10.3390/ani14172465

3. Bustani G.S., Baiee F.H. Semen extenders: An evaluative overview of preservative mechanisms of semen and semen extenders. Veterinary World. 2021;14(5):1220-1233. www.doi.org/10.14202/vetworld.2021.1220-1233

4. du Plessis S.S., Agarwal A., Mohanty G., Van der Linde M. Oxidative phosphorylation versus glycolysis: What fuel do spermatozoa use? Asian J. Androl. 2015;17(2):230-235. doi: 10.4103/1008-682X.135123

5. Fahy G.M., Lilley T.H., Linsdell H., Douglas M.S., Meryman H.T. Cryoprotectant toxicity and cryoprotectant toxicity reduction: In search of molecular mechanisms. Cryobiology. 1990;27:247–268

6. Mazur P. Principles of Cryobiology. In Life in the Frozen State; Fuller, B.J., Lane, N., Benson, E.E., Eds.; CRC Press: Boca Raton, FL, USA; 2004.

7. Nikitkina E., Shapiev I., Musidray A., Krutikova A., Plemyashov K., Bogdanova S., Leibova V., Shiryaev G., Turlova J. Assessment of Semen Respiratory Activity of Domesticated Species before and after Cryopreservation: Boars, Bulls, Stallions, Reindeers and Roosters. Vet. Sci. 2022;9:513. https://doi.org/10.3390/vetsci9100513

8. Tvrdá E., Árvay J., Ďuračka M., Kačániová M. Mitochondria-Stimulating and Antioxidant Effects of Slovak Propolis Varieties on Bovine Spermatozoa. Oxygen. 2023;3: 179-189. https://doi.org/10.3390/oxygen3020013

9. Zuidema D., Kerns K., Sutovsky P. An Exploration of Current and Perspective Semen Analysis and Sperm Selection for Livestock Artificial Insemination. Animals. 2021;11: 3563. https://doi.org/10.3390/ani11123563